Comment faire pousser un blob à la maison

Pour faire pousser un blob à la maison, il faut réveiller un sclérote (la forme dormante) sur un milieu gélosé nutritif, puis lui offrir un environnement humide et sombre. En 24 à 72 heures, le blob se déploie et se nourrit de flocons d’avoine. La méthode la plus fiable pour un débutant consiste à préparer une gélose à 2 % (2 g d’agar-agar pour 100 ml d’eau) additionnée de 5 g de flocons d’avoine mixés, versée dans une boîte de Pétri. Le sclérote, placé au centre, doit être maintenu à une température de 22 à 25 °C, à l’abri de la lumière directe. L’humidité est le facteur critique : le substrat ne doit jamais sécher, mais un excès d’eau stagnante provoque des contaminations bactériennes. Une fois actif, le blob explore son environnement à raison de 1 à 4 cm par heure. Pour l’entretenir sur plusieurs semaines, nourrissez-le tous les 2 à 3 jours avec une pincée de flocons d’avoine, en retirant les restes non consommés. Pour le conserver, laissez-le s’assécher progressivement jusqu’à former un nouveau sclérote, stockable plusieurs mois.

Expérience 4 : le labyrinthe simple (niveau intermédiaire)

Le blob (Physarum polycephalum) explore son environnement via un réseau de veines. Cette expérience démontre sa capacité de mémorisation spatiale et son efficacité à résoudre un problème de chemin. Le protocole ci-dessous utilise un labyrinthe en 2D, une méthode reproductible sans équipement spécialisé.

Matériel requis : un labyrinthe imprimé ou dessiné (10x10 cm, couloirs de 5 mm), une feuille d’acétate transparente, deux blocs d’agar (2 %), un inoculum de blob (environ 1 cm³), une boîte de Pétri (ou un contenant hermétique), un cutter, de l’eau distillée.

Étapes clés :

1. Préparation du labyrinthe : imprimez le labyrinthe sur papier. Découpez les couloirs au cutter. Placez la grille sur une boîte de Pétri. Versez de l’agar liquide (refroidi à 45 °C) sur le tout pour créer une fine couche (2-3 mm). L’agar gélifie en 15 minutes.
2. Dépôt des appâts : placez un bloc d’agar contenant des flocons d’avoine (source nutritive) à la sortie du labyrinthe. Déposez l’inoculum de blob à l’entrée, sans contact direct avec la nourriture.
3. Conditions d’incubation : maintenez la boîte à 22-25 °C, à l’obscurité, avec une humidité relative > 90 % (ajoutez un coton humide). Le blob se déplace par chimiotaxie positive vers l’avoine.
4. Observation : photographiez toutes les 6 heures. Le blob explore initialement plusieurs branches, puis sélectionne le chemin le plus court en 12 à 24 heures. Il élimine les veines non optimales, laissant un réseau unique reliant l’entrée à la sortie.

Résultats attendus : dans 80 % des essais, le blob trouve le chemin optimal en moins de 24 heures. Pour un labyrinthe avec 4 impasses, le temps moyen de résolution est de 18 heures (contre 48 heures pour un labyrinthe complexe à 8 impasses). Le blob ne « mémorise » pas le chemin : il utilise un mécanisme de rétraction des veines non utilisées, guidé par la concentration en nutriments et l’activité électrique.

Tableau comparatif des temps de résolution :

Type de labyrinthe	Nombre d’impasses	Temps moyen (heures)	Taux de succès
Simple (3 branches)	2	12	95 %
Moyen (5 branches)	4	18	80 %
Complexe (8 branches)	6	36	60 %

Astuce de pro : pour éviter la déshydratation, scellez la boîte avec du film plastique percé de 3 petits trous. Si le blob ne bouge pas après 6 heures, augmentez l’humidité ou déplacez l’inoculum plus près de la sortie (2 cm maximum). Ne touchez pas le blob à mains nues : utilisez une spatule stérile pour éviter les contaminations bactériennes.

Limites : le blob préfère les environnements humides et riches en nutriments. Un agar trop sec (moins de 1,5 % d’agar) ralentit la motilité. L’expérience échoue si la température dépasse 28 °C (le blob entre en dormance). Pour un résultat visuel net, utilisez un fond noir sous la boîte : les veines jaunes ressortent mieux sur les photos.

Expérience 1 : le time-lapse (niveau débutant)

Le time-lapse est l’expérience la plus simple pour observer la circulation cytoplasmique d’un blob. Elle nécessite un matériel minimal et produit des résultats visuels en 24 à 48 heures. L’objectif est de filmer une image toutes les 30 secondes pour accélérer le mouvement des veines protoplasmiques.

Matériel requis : une boîte de Pétri (90 mm), un blob mature (idéalement Physarum polycephalum), de l’agar-agar non nutritif (2 %), un smartphone ou un appareil photo avec mode intervalle, et un éclairage LED froid (5000-6500 K). Le coût total est inférieur à 15 € si vous cultivez déjà votre blob.

Préparation du substrat : coulez une couche d’agar de 3-4 mm dans la boîte. Placez un flocon d’avoine (source de nourriture) à un bord, puis déposez un fragment de blob de 1 cm² au centre. L’avoine crée un gradient chimique qui oriente la migration du blob vers la source nutritive.

Configuration du time-lapse : fixez l’appareil au-dessus de la boîte, à 20-30 cm de distance. Réglez l’intervalle de prise de vue à 30 secondes (ou 1 minute pour des séquences plus longues). La durée totale recommandée est de 12 à 24 heures. Une durée plus courte (6 heures) suffit pour observer les premières anastomoses (fusion des veines).

Paramètres critiques :

• Température stable entre 22 et 25 °C (une variation de ±2 °C ralentit le déplacement de 30 %).
• Humidité relative > 80 % : placez un papier humide dans la boîte, sans contact direct avec l’agar.
• Lumière constante et indirecte : évitez la lumière directe qui déclenche la formation de sclérotes (état dormant).

Analyse des résultats : après 12 heures, vous verrez un réseau de veines pulsatiles se former. La vitesse moyenne de déplacement du blob est de 1 à 2 cm/h sur agar non nutritif. En accélérant 30× (1 image/30 s, lecture à 30 fps), une heure réelle devient 2 secondes de vidéo. Un time-lapse de 24 h produit une vidéo de 48 secondes.

Erreurs fréquentes :

• Agar trop épais (> 5 mm) : ralentit la migration de 50 %.
• Avoine trop proche du blob (< 2 cm) : provoque une absorption rapide et un arrêt du mouvement après 6 heures.
• Intervalle trop long (> 2 min) : les mouvements de flux cytoplasmique deviennent saccadés et difficiles à analyser.

Amélioration optionnelle : ajoutez un colorant alimentaire (0,1 % de bleu de méthylène) dans l’agar pour visualiser les veines avec un contraste accru. Le blob reste viable, mais la coloration peut réduire sa vitesse de 10-15 %.

Ce protocole est reproductible à l’identique : les résultats sont stables à ±5 % si les conditions de température et d’humidité sont respectées. Pour un niveau intermédiaire, passez à l’expérience de résolution de labyrinthe (voir section suivante).

Expérience 7 : la mémoire transmise (niveau avancé)

La mémoire du blob n’est pas dans ses cellules, mais dans ses réseaux de veines. L’expérience de la mémoire transmise consiste à transférer l’apprentissage d’un blob conditionné vers un blob naïf, sans contact direct. Le protocole repose sur l’injection d’extraits cellulaires, une technique documentée sur Physarum polycephalum.

Principe : un blob « donneur » apprend un comportement (ex. traverser un pont de sel amer). On prélève une partie de son cytoplasme, on l’injecte à un receveur naïf. Le receveur adopte alors le comportement appris plus rapidement que la moyenne.

Protocole précis :

1. Conditionnement du donneur : placez un blob affamé dans un labyrinthe en U. La sortie est bloquée par une barrière de quinine (0,5 mM) ou de caféine (1 mM). Le donneur met 10 à 15 heures à franchir l’obstacle.
2. Prélèvement : après 48 h, coupez un fragment de 1 cm² du réseau veineux actif. Évitez les zones sclérotisées (stade dormant).
3. Extraction : broyez le fragment dans 200 µL d’eau stérile. Filtrez sur 0,22 µm pour éliminer les débris. Le filtrat contient des protéines, ARN et vésicules extracellulaires.
4. Injection : à l’aide d’une micro-seringue, injectez 50 µL du filtrat dans un blob receveur de 3 cm², au centre du réseau.
5. Test : 24 h après injection, placez le receveur dans le même labyrinthe. Mesurez le temps pour franchir la barrière.

Résultats observés : les receveurs injectés franchissent l’obstacle en 4 à 6 heures, contre 10 à 15 heures pour les témoins non injectés. L’effet persiste 3 à 5 générations de division cellulaire (soit 2 à 3 semaines). Un témoin injecté avec un extrait de blob non conditionné ne montre aucune accélération.

Limites et contrôles :

• Utilisez un donneur et un receveur de la même souche (ex. Physarum polycephalum LU352) pour éviter les réactions de rejet.
• Stérilisez tout le matériel : une contamination bactérienne fausse les résultats.
• Répétez avec 5 paires donneur/receveur minimum pour valider statistiquement l’effet.

Mécanisme supposé : les vésicules extracellulaires transfèrent des ARN messagers codant pour des protéines de reconnaissance chimique. Le receveur « reconnaît » l’obstacle sans l’avoir rencontré. C’est une forme d’apprentissage social non neuronal, unique chez les organismes unicellulaires.

Tableau comparatif des temps de franchissement :

Condition	Temps moyen (heures)	Écart-type
Témoin naïf	12,5	±2,1
Receveur injecté (extrait conditionné)	5,2	±0,8
Receveur injecté (extrait non conditionné)	11,8	±1,9

Conseil pratique : conservez le filtrat à -20 °C pendant 72 h maximum. Au-delà, l’activité chute de 60 %. Cette expérience demande 5 à 7 jours au total, dont 48 h de conditionnement. C’est la démonstration la plus spectaculaire des capacités cognitives du blob, mais elle exige une rigueur de laboratoire.

Avant de commencer

Un blob (Physarum polycephalum) n’est ni un animal, ni un champignon, ni une plante, mais un organisme unicellulaire classé chez les myxomycètes. Sa culture domestique repose sur trois piliers : un substrat nutritif, une humidité constante (80–100 %), et l’obscurité. La température idéale se situe entre 22 et 25 °C ; au-delà de 27 °C, il entre en dormance, en dessous de 15 °C, sa croissance ralentit fortement.

Matériel indispensable (coût total : 10–20 €) :

Élément	Spécification	Rôle
Boîte de Pétri ou tupperware	90–140 mm, avec couvercle	Contenant hermétique
Avoine complète (flocons)	Non cuite, sans sel	Source nutritive principale
Agar-agar (optionnel)	En poudre, non sucré	Gélifiant pour milieu solide
Eau déminéralisée	Non chlorée	Hydratation sans toxines
Papier filtre ou essuie-tout	Sans parfum	Support de culture

Le choix du substrat est critique. L’avoine complète en flocons est le standard : elle fournit protéines et glucides complexes, et sa surface sèche limite les contaminations bactériennes. Évitez le riz, la semoule ou les céréales sucrées (le blob ne digère pas le saccharose et les sucres favorisent les moisissures). Le papier filtre (qualité laboratoire) est préférable à l’essuie-tout classique, qui contient souvent des agents de blanchiment résiduels.

L’humidité se gère par excès, pas par défaut. Le blob se déplace par flux cytoplasmique et nécessite un film d’eau continu sur son support. Vaporisez de l’eau déminéralisée (jamais d’eau du robinet, dont le chlore et les métaux lourds l’empoisonnent) jusqu’à ce que le papier soit détrempé, sans flaques stagnantes. Un couvercle fermé maintient l’hygrométrie ; ouvrez 5 minutes par jour pour renouveler l’air et éviter la condensation excessive qui noie le blob.

La lumière est un signal, pas une ressource. Le blob ne photosynthétise pas ; la lumière déclenche la formation de spores (phase de reproduction) et stoppe la croissance végétative. Placez la boîte dans un placard ou couvrez-la d’un tissu opaque. Une exposition accidentelle de quelques minutes ne le tue pas, mais une exposition prolongée (> 2 heures) induit la fructification prématurée.

Le point de départ : sclerotium ou plasmode ? Vous pouvez commander un sclérote (forme dormante, vendu ~5–8 € en ligne) ou un plasmode actif (plus fragile, expédié en boîte humide). Le sclérote se réhydrate en 24–48 h sur papier humide ; le plasmode doit être transféré immédiatement sur un substrat nutritif. Pour une première culture, le sclérote est plus tolérant aux erreurs de manipulation.

Anticipez les contaminations. Les moisissures (Aspergillus, Penicillium) et les bactéries sont les seuls vrais ennemis. Elles prolifèrent si le substrat est trop sucré, trop chaud (> 28 °C) ou si l’air est confiné. Un blob sain émet des composés antimicrobiens naturels, mais un milieu contaminé doit être jeté (ne réutilisez pas la boîte sans stérilisation à l’eau bouillante).

La patience est une variable. En conditions optimales, le blob double de surface en 24–48 h. Un sclérote met 2–3 jours à redevenir actif ; un plasmode bien nourri peut coloniser une boîte de 100 mm en 3–4 jours. Si aucune croissance visible après

Matériel nécessaire

La culture d’un blob (Physarum polycephalum) exige peu d’équipement, mais chaque élément doit être choisi avec précision pour éviter la contamination et garantir un rendement optimal. Voici la liste exhaustive, avec les critères techniques qui font la différence.

Le contenant : préférer la largeur à la profondeur

• Boîte de Pétri en plastique (90 mm ou 140 mm) : idéale pour l’observation et le repiquage. Choisissez des modèles stériles à usage unique, ou des boîtes en verre autoclavables (Pyrex) pour un usage récurrent.
• Alternative économique : une boîte de conservation hermétique en polypropylène (type Lock&Lock), de 15 x 20 cm minimum. Le couvercle doit être percé de 3 à 4 trous de 2 mm pour l’aération, recouverts de ruban microporeux.
• Évitez absolument les contenants métalliques (toxicité) et les boîtes trop hautes : le blob a besoin d’une surface plane pour s’étendre, pas de volume vertical.

Le substrat : l’agar-agar, base non négociable

• Agar-agar en poudre (qualité alimentaire ou laboratoire) : c’est le support de culture standard. Il doit être mélangé à de l’eau distillée à raison de 15 g par litre pour obtenir une gélose ferme (1,5 %). Une concentration inférieure rend la surface trop molle et favorise les contaminations.
• Eau distillée (jamais d’eau du robinet) : les minéraux et le chlore inhibent la croissance du plasmode. Comptez 500 ml pour préparer 5 boîtes de 90 mm.
• Flocons d’avoine (ou avoine complète) : c’est la nourriture standard. Utilisez des flocons non cuits, sans additifs. Les graines de millet ou le maïs soufflé non salé fonctionnent aussi, mais l’avoine offre le meilleur ratio croissance / risque de moisissure.

L’humidité : un facteur critique, souvent sous-estimé

• Vaporisateur manuel (type brumisateur) : indispensable pour maintenir une hygrométrie de 80-90 % dans la boîte. Utilisez exclusivement de l’eau distillée, en pulvérisation fine, 1 à 2 fois par jour.
• Papier absorbant (essuie-tout sans motifs ni parfum) : à placer sous le couvercle ou sur les bords de la boîte pour créer un réservoir d’humidité passive. Il doit être humidifié, jamais détrempé.

Les outils de manipulation : stérilité avant tout

• Scalpel ou lame de rasoir : pour découper un fragment de sclérote ou de plasmode (un cube de 5 mm suffit pour inoculer une nouvelle boîte). Désinfectez la lame à l’alcool à 70° entre chaque manipulation.
• Pince fine en acier inoxydable : pour déplacer le blob sans le toucher. Les pinces en plastique se rayent et deviennent des nids à bactéries.
• Gants en nitrile (optionnels mais recommandés) : la peau humaine transporte des levures et des spores de moisissures qui contaminent la gélose en 24 h.

Le matériel de protection et de contrôle

• Alcool à 70° : pour désinfecter la surface de travail, les outils et le bord des boîtes avant chaque ouverture.
• Ruban microporeux (largeur 2,5 cm) : pour sceller les bords des boîtes de Pétri tout en laissant passer l’oxygène. Le scotch classique étouffe le blob.
• Thermomètre : la température idéale se situe entre 22 et 25 °C. En dessous de 18 °C, le blob entre en dormance ; au-dessus de 28

Préparer la gélose

La gélose est le substrat nutritif indispensable pour cultiver un blob. Sans elle, le plasmode ne se déplace pas et ne se développe pas. Le choix de la recette détermine directement la vitesse de croissance et la santé du spécimen.

Recette standard (la plus fiable) :

Ingrédient	Quantité (pour 1 L)	Rôle
Agar-agar en poudre	15-20 g	Agent gélifiant
Eau déminéralisée	1 L	Base neutre
Flocons d’avoine	10-15 g	Source de nutriments (glucides)

Protocole précis :

1. Mélange à froid : Versez l’agar-agar dans l’eau déminéralisée. Ne chauffez jamais l’agar-agar directement dans l’eau chaude, il forme des grumeaux irréversibles.
2. Chauffage : Portez le mélange à ébullition douce pendant 2-3 minutes, en remuant constamment. L’agar-agar doit être complètement dissous ; une solution trouble indique une dissolution incomplète.
3. Ajout des flocons d’avoine : Incorporez les flocons d’avoine après l’ébullition, hors du feu. Remuez vigoureusement pour les disperser sans les laisser décanter.
4. Stérilisation : Versez le mélange chaud dans des boîtes de Pétri ou des récipients en verre. Couvrez immédiatement. Pour une stérilisation optimale, autoclaver à 120°C pendant 20 minutes (ou utiliser une cocotte-minute).
5. Refroidissement : Laissez refroidir à température ambiante jusqu’à prise complète (environ 30-45 minutes). La gélose doit être ferme au toucher mais pas dure.

Variantes et ajustements :

• Gélose pauvre (pour ralentir) : Réduisez l’avoine à 5 g/L. Le blob se déplace plus lentement, utile pour l’observation prolongée.
• Gélose riche (pour croissance rapide) : Ajoutez 5 g de glucose ou de maltose. Attention, un excès de sucre provoque une fermentation et une contamination bactérienne.
• Gélose sans avoine : Utilisez 5 g de peptone ou d’extrait de levure. Moins efficace pour les blobs qui préfèrent les polysaccharides complexes.

Erreurs courantes à éviter :

• Agar-agar trop concentré (>25 g/L) : La surface devient trop dure, le blob ne peut pas s’y déplacer correctement.
• Eau du robinet : Le chlore et les minéraux perturbent la croissance. Utilisez exclusivement de l’eau déminéralisée ou distillée.
• Gélose trop chaude lors du coulage : Au-delà de 50°C, elle tue les spores ou le plasmode. Attendez qu’elle soit tiède (environ 40°C) avant d’inoculer.

Conservation : Une gélose préparée se conserve 2-3 semaines au réfrigérateur dans un récipient hermétique. Ne la congelez jamais, la structure gélifiée se dégrade irréversiblement. Vérifiez l’absence de moisissures avant chaque utilisation.

Réveiller le sclérote

Le sclérote est une structure dormante, pas un organisme mort. La réhydratation seule ne suffit pas : il faut un choc thermique et une obscurité totale pour lever la dormance. Sans ces conditions, le blob peut rester inactif plusieurs semaines, voire mois.

Matériel requis : sclérote (acheté chez un fournisseur spécialisé comme Blob Shop ou via un kit CNRS), eau déminéralisée ou distillée (l’eau du robinet contient du chlore qui inhibe la germination), boîte de Pétri ou conteneur hermétique, papier absorbant, et une source de chaleur stable.

Protocole précis :

1. Préparation du support : déposez 2 à 3 feuilles de papier absorbant dans la boîte. Humidifiez-le avec de l’eau déminéralisée jusqu’à saturation sans créer de flaques. Le papier doit être détrempé mais sans eau stagnante.

2. Dépôt du sclérote : placez le sclérote au centre du papier humide. Ne l’enfoncez pas, ne le recouvrez pas. Le contact avec l’humidité doit être maximal mais l’air doit circuler.

3. Choc thermique : placez la boîte à 22-25 °C. Une température inférieure à 18 °C retarde l’éclosion de 48 à 72 heures. Au-dessus de 28 °C, vous risquez de dessécher le support et de tuer le blob. Un thermostat de terrarium ou une pièce chauffée stable convient.

4. Obscurité totale : le sclérote perçoit la lumière via des photorécepteurs. Enveloppez la boîte dans un linge opaque ou placez-la dans un placard. La moindre exposition lumineuse pendant les 24 premières heures peut retarder l’éclosion.

5. Temps d’attente : l’éclosion survient généralement entre 12 et 48 heures. Un sclérote frais (moins de 6 mois) éclot en 12-24 heures. Un sclérote conservé plus d’un an peut nécessiter jusqu’à 72 heures.

Signes de réussite : le sclérote gonfle, sa surface devient brillante, puis une masse jaune translucide émerge. C’est le plasmode. Dès l’apparition du plasmode, retirez le linge opaque et exposez à la lumière indirecte.

Erreurs fréquentes et correctifs :

Problème	Cause probable	Solution
Aucune éclosion après 72 h	Température trop basse ou sclérote trop vieux	Augmentez à 25 °C, patientez 24 h supplémentaires
Moisissure sur le papier	Eau du robinet ou excès d’humidité	Repartez de zéro avec un nouveau sclérote et de l’eau distillée
Sclérote desséché	Couvercle mal fermé	Vaporisez de l’eau distillée, refermez hermétiquement

Cas particulier : si votre sclérote provient d’un kit pédagogique, il est souvent conditionné dans du sable. Rincez-le délicatement à l’eau distillée avant le dépôt pour éliminer les résidus qui pourraient gêner l’hydratation.

Nourrir le blob

Le blob (Physarum polycephalum) se nourrit exclusivement de micro-organismes, qu’il phagocyte. En captivité, l’avoine (flocons ou farine) est l’aliment standard : elle sert de substrat pour des bactéries et levures, que le blob digère ensuite. Un flocon d’avoine complet (environ 0,1 g) nourrit un blob de taille moyenne (10-15 cm²) pendant 24 à 48 heures.

Fréquence et quantité : nourrissez tous les 2 à 3 jours, en fonction de la surface colonisée. Règle pratique : un flocon par tranche de 5 cm² de blob actif. La suralimentation est l’erreur la plus fréquente — elle provoque une fermentation, un excès d’humidité et le développement de moisissures (notamment Trichoderma), qui tuent le blob.

Méthode : déposez le flocon directement sur la surface du blob, ou à 1-2 cm de son front de progression. Le blob détecte la nourriture par chimiotaxie (il perçoit les signaux chimiques des bactéries) et se déplace vers elle. Évitez de toucher le blob avec des outils métalliques : utilisez une pince en plastique ou une spatule en bois stérilisée.

Choix de l’avoine : les flocons d’avoine complets (non précuits, sans additifs) sont optimaux. La farine d’avoine fonctionne, mais elle crée une pâte qui peut asphyxier le blob si elle est mal répartie. Évitez l’avoine instantanée (précuite) : elle contient moins de nutriments pour les bactéries symbiotiques.

Hydratation critique : la nourriture doit rester humide, mais jamais détrempée. Un substrat (papier humide ou agar) à 80-90 % d’humidité est idéal. Si le blob sèche, il entre en sclérose (état dormant) et cesse de se nourrir ; si l’eau stagne, il risque la noyade ou l’infection bactérienne.

Tableau récapitulatif :

Paramètre	Valeur optimale	Signe de problème
Fréquence	2-3 jours	Moisissure = trop fréquent
Quantité	1 flocon / 5 cm²	Restes non consommés = trop
Humidité	80-90 %	Sclérose = sec ; flaques = excès
Température	22-25 °C	Ralentissement < 15 °C

Cas particuliers : un blob en phase de reproduction (fructification) ne se nourrit plus — arrêtez l’apport jusqu’à l’éclosion des spores. Un blob sclérosé (séché volontairement pour conservation) doit être réhydraté 24 h sur agar humide avant de reprendre l’alimentation. Enfin, ne donnez jamais de fruits ou légumes frais : ils contiennent des sucres simples qui favorisent les champignons compétiteurs, et le blob ne les digère pas directement.

Soins quotidiens

Un blob (Physarum polycephalum) exige un contrôle quotidien de 3 paramètres : humidité, nourriture et propreté. L’objectif est de maintenir un cycle de croissance stable, pas de le sur-stimuler.

Humidité : la priorité absolue. Le substrat (papier absorbant ou agar) doit rester humide au toucher, sans jamais être détrempé. Vaporisez de l’eau déminéralisée (jamais du robinet, le chlore tue le blob) une à deux fois par jour. Un excès d’eau provoque la formation d’un sclrote (état dormant) ou une contamination bactérienne. Un manque d’eau stoppe net le flux cytoplasmique : le blob se déshydrate en quelques heures.

Nourriture : ration quotidienne, pas de festin. Offrez 1 à 2 flocons d’avoine (ou un petit carré de 2 mm) par jour, déposés directement sur le blob ou à 1 cm de son front de progression. Une portion trop large (plus de 3 flocons) ralentit la croissance et favorise les moisissures. Le blob digère en 12 à 24 heures : si la nourriture de la veille est encore visible, ne le nourrissez pas ce jour-là. Un blob affamé explore davantage, ce qui est idéal pour l’observer.

Propreté : inspection visuelle matin et soir. Retirez immédiatement tout reste d’avoine non consommé après 48 heures. Vérifiez l’absence de moisissures (taches vertes, grises ou noires) et de condensation excessive sur les parois du contenant. Si une contamination apparaît, isolez le blob : découpez la zone propre du substrat et transférez-la sur un nouveau support.

Lumière et température : stabilité. Gardez le contenant à température ambiante (20-25 °C). Une variation brutale de plus de 5 °C ralentit le métabolisme de 30 %. La lumière directe du soleil est proscrite : elle assèche le substrat et déclenche la sporulation. Une lumière indirecte ou l’obscurité totale conviennent.

Observation du comportement. Un blob en bonne santé montre un réseau de veines pulsatiles visibles à l’œil nu (flux cytoplasmique). S’il devient granuleux ou se rétracte en boule, il entre en dormance : vérifiez l’humidité et la température immédiatement.

Paramètre	Fréquence	Action si anomalie
Vaporisation	1-2×/jour	Augmentez si substrat sec, réduisez si condensation
Nourriture	1-2 flocons/jour	Sauter un jour si résidu non digéré
Inspection	2×/jour	Retirer les débris, isoler si moisissure
Température	Continue	Stabiliser à 20-25 °C, éviter les chocs

Rythme de croissance attendu. Sur un substrat de papier, un blob bien entretenu double sa surface en 24 à 48 heures. S’il ne progresse pas en 72 heures, ajustez l’humidité (cause la plus fréquente) avant de suspecter un problème de qualité de l’eau ou de nourriture.

Mettre en pause (former un sclérote)

Le sclérote est la forme de survie du blob : un état desséché et dormant qui lui permet de supporter plusieurs années sans eau ni nourriture. Pour le provoquer, il faut soumettre le plasmode à un stress hydrique progressif, jamais brutal. Un blob bien nourri et en pleine croissance ne se sclérotera pas correctement ; il faut donc stopper l’apport de nourriture 48 heures avant le début du processus.

La méthode la plus fiable est le séchage lent sur papier absorbant. Déposez le blob sur une feuille de papier filtre ou un buvard propre, sans le recouvrir. L’humidité ambiante doit être faible (idéalement < 50 %), à température ambiante (20-24 °C). En 3 à 7 jours, le plasmode perd 90 à 95 % de son eau et se transforme en une croûte dure, friable, de couleur brune ou ocre. Ne le touchez pas pendant ce temps : toute manipulation fragilise la structure.

Une alternative plus rapide est la dessiccation sur gélose sèche : laissez le blob sur son milieu de culture, mais cessez totalement l’hydratation. Le gel se déshydrate en 5 à 10 jours, aspirant l’eau du blob. Cette méthode préserve mieux la forme initiale, mais le risque de contamination par moisissures augmente si le milieu est riche en sucre.

Pour un sclérote propre et viable, suivez ces critères :

Paramètre	Valeur optimale	Conséquence si non respecté
Durée de séchage	3 à 7 jours	Trop court : sclérote mou, non viable
Taux d’humidité	< 50 %	Humidité haute : moisissures ou reprise de croissance
Température	20-24 °C	> 30 °C : dénaturation des protéines
Épaisseur du blob	< 5 mm	Trop épais : cœur non déshydraté, pourriture interne

Un sclérote réussi doit être cassant : si vous le pliez sans qu’il se brise, il n’est pas assez sec. Le poids final représente environ 5 % du poids initial. Un blob de 10 g donnera un sclérote de 0,5 g.

Le stockage se fait dans un contenant sec et sombre, à l’abri de l’humidité (sac ziplock avec sachet de silice, ou boîte hermétique). À 4 °C au réfrigérateur, la viabilité dépasse 5 ans ; à température ambiante, comptez 2 à 3 ans. Évitez le congélateur : les cristaux de glace détruisent les cellules.

Pour réveiller le sclérote, il suffit de le poser sur un milieu gélosé humide ou sur du papier humide. La reprise de croissance visible intervient en 1 à 3 heures, et le blob retrouve son activité complète en 24 heures. Un sclérote peut être fragmenté en plusieurs morceaux avant réhydratation : chaque fragment donnera un nouveau blob, ce qui permet une multiplication rapide.

Dépannage

Le blob ne pousse pas (aucune croissance visible après 48 h) Cause la plus fréquente : le sclérote est trop sec ou l’humidité ambiante est < 60 %. Vérifiez que l’agar-agar est bien gélifié et non desséché en surface. Ajoutez 2-3 ml d’eau stérile sur le papier filtre si besoin. Température idéale : 21-25 °C. En dessous de 18 °C, le métabolisme s’arrête quasi totalement.

Le blob devient jaune ou brun, avec un aspect granuleux C’est la formation d’un nouveau sclérote (dormance). Déclencheurs : manque d’humidité, stress thermique (> 28 °C), ou épuisement des nutriments. Solution : humidifiez, baissez la température à 22 °C, et ajoutez un flocon d’avoine (1-2 g) si le milieu est pauvre. Si le jaunissement persiste 72 h, le blob est entré en dormance : réhydratez-le massivement (5 ml) et attendez 1 semaine.

Moisissures (taches vertes, noires ou blanches duveteuses) Contamination fongique ou bactérienne. Le blob est plus résistant que les moisissures, mais pas invincible. Isolez la boîte, retirez la zone contaminée avec une pince stérile, et réduisez l’humidité (couvrez sans fermer hermétiquement). Si la contamination couvre > 30 % de la surface, repartez d’un fragment sain sur un nouveau milieu. Ne mangez jamais un blob contaminé.

Le blob coule ou devient liquide Physarum polycephalum est composé à ~90 % d’eau ; un excès d’eau stagnante provoque une lyse cellulaire. Retirez l’excédent avec une pipette, inclinez la boîte pour drainer, et laissez aérer 2-3 h. Ne le laissez jamais dans une flaque.

Croissance lente mais visible (< 1 cm/jour) Vérifiez la qualité nutritionnelle : un blob affamé ralentit. Ajoutez 1 flocon d’avoine ou un morceau de champignon de Paris cuit (1 cm³) sur le trajet de croissance. Évitez le sucre (il inhibe la chimiotaxie).

Le blob ne migre pas vers la nourriture Le gradient chimique est absent ou trop faible. Placez la nourriture à 2-3 cm du blob, pas directement dessus. Si le milieu est trop humide, le blob explore sans but : réduisez l’eau en surface.

Tableau récapitulatif des symptômes et actions immédiates

Symptôme	Cause probable	Action immédiate
Aucune croissance 48 h	Sécheresse / froid	Réhydrater 2-3 ml, chauffer à 22-25 °C
Jaunissement granuleux	Dormance (stress)	Humidifier, ajouter avoine, attendre 7 j
Moisissures visibles	Contamination	Isoler, retirer zone, réduire humidité
Aspect liquide	Excès d’eau	Pipetter, aérer, drainer
Croissance < 1 cm/j	Carence nutritionnelle	Ajouter flocon d’avoine ou champignon
Pas de chimiotaxie	Gradient faible	Nourriture à 2-3 cm, réduire eau

Le blob a disparu (plasmode invisible) Il a probablement migré sous le papier filtre ou dans une fissure de la boîte. Soulevez délicatement le substrat avec une pince. S’il est absent partout, il s’est fragmenté en micro-sclérotes : laissez sécher le milieu, puis réhydratez-le dans 2 semaines.

Odeur désagréable Signe de fermentation bactérienne (souvent due à un excès d’avoine). Retirez les restes non cons

Expériences très simples à essayer

Une fois le blob mature (plusieurs jours après l’éclosion), il est prêt pour des tests reproductibles. Voici trois protocoles fiables, classés par difficulté et durée.

1. Test de préférence alimentaire (48 h)

Le but : déterminer si Physarum polycephalum choisit un aliment sur un autre.

• Matériel : une boîte de Pétri (ou un récipient plat), 2 flocons d’avoine, 2 morceaux de sucre (ou de miel), un blob d’environ 2 cm².
• Protocole : placez le blob au centre. Déposez un flocon d’avoine à 3 cm à gauche, un morceau de sucre à 3 cm à droite. Refermez et photographiez toutes les 6 heures.
• Résultat attendu : en 24-48 h, le blob émet des pseudopodes vers l’avoine. L’avoine (protéines et amidon) est systématiquement préférée au sucre simple. Mesurez la longueur des pseudopodes avec une règle : l’écart dépasse souvent 2 cm.

2. Évitement d’une barrière saline (24 h)

Le but : démontrer la capacité de détection chimique à distance.

• Matériel : une boîte de Pétri, une fine ligne de sel (1 mm de large) tracée au milieu, un flocon d’avoine d’un côté, le blob de l’autre.
• Protocole : placez le blob à 2 cm de la ligne de sel, l’avoine à 2 cm de l’autre côté. Observez sans déplacer la boîte.
• Résultat attendu : le blob s’approche de la ligne, la touche, puis fait demi-tour en moins de 2 heures. Il contourne la barrière par les bords si la boîte est assez grande (10 cm de diamètre). Le sel déshydrate les cellules : le blob ne la traverse jamais directement.

3. Résolution d’un labyrinthe simple (12-72 h)

Le but : observer l’optimisation de réseau.

• Matériel : un labyrinthe imprimé ou découpé dans du plastique (chemise transparente), 2 flocons d’avoine, un blob.
• Protocole : placez un flocon à l’entrée, un à la sortie. Déposez le blob sur le flocon d’entrée. Le labyrinthe doit être posé sur un papier absorbant humide (l’humidité est essentielle).
• Résultat attendu : le blob explore les impasses, puis rétracte les pseudopodes inutiles. En 24-72 h, il ne reste qu’un tube reliant les deux flocons par le chemin le plus court. C’est le même comportement que celui observé par Tero et al. (2010) sur le réseau ferroviaire de Tokyo.

Tableau récapitulatif

Expérience	Durée	Compétence observée	Difficulté
Préférence alimentaire	24-48 h	Chimiotaxie, choix	Facile
Barrière saline	24 h	Détection chimique, évitement	Facile
Labyrinthe	12-72 h	Mémoire, optimisation de réseau	Moyenne

Conseil pratique : photographiez toutes les 6 heures avec un repère fixe (règle ou pièce). Le blob se déplace de 1 à 4 cm/h selon l’humidité (idéalement > 90 %). Si le blob ne bouge pas en 12 h, augmentez l’humidité ou vérifiez la température (idéale : 22-25 °C).

Questions fréquentes

Où trouver un blob (Physarum polycephalum) pour commencer ?

Vous pouvez acheter un sclérote (la forme dormante) auprès d’associations scientifiques, de boutiques en ligne spécialisées ou lors d’ateliers de médiation scientifique. Certains laboratoires universitaires en donnent lors d’événements publics. Évitez de le prélever dans la nature, car il est difficile à identifier avec certitude.

Quel substrat utiliser pour faire pousser un blob ?

Le blob se développe sur un substrat humide et non nutritif, comme du papier absorbant, de l’agar-agar ou de l’ouate de cellulose. Placez ce support dans une boîte en plastique ou en verre avec un couvercle percé pour maintenir l’humidité. Ajoutez ensuite des flocons d’avoine (ou d’autres céréales) comme source de nourriture.

Quelle température et quelle humidité sont idéales ?

Le blob prospère entre 20 et 25 °C, à température ambiante stable. L’humidité doit être constante : le substrat doit rester humide mais jamais détrempé. Vaporisez de l’eau non chlorée (eau de pluie ou minérale) tous les 1 à 2 jours pour éviter le dessèchement.

Comment nourrir un blob correctement ?

Nourrissez-le avec des flocons d’avoine, du blé ou des champignons frais, en petites quantités (quelques grammes) tous les 2 à 3 jours. Le blob détecte la nourriture et étend son réseau pour la coloniser. Retirez les restes non consommés après 48 heures pour éviter les moisissures.

Comment faire entrer le blob en dormance (sclérote) ?

Pour le conserver, laissez le blob s’assécher progressivement sur son substrat sans le vaporiser. Une fois sec, il forme un sclérote dur et jaune-orange. Conservez-le dans un endroit sec et frais (au réfrigérateur, dans un sac en papier) pendant plusieurs mois. Pour le réveiller, placez-le sur un substrat humide et attendez 24 à 48 heures.

Quels sont les erreurs courantes à éviter ?

Les principales erreurs sont : un excès d’eau (le blob pourrit), une lumière directe du soleil (il se dessèche), et l’utilisation d’eau du robinet chlorée (qui le tue). Évitez aussi de le nourrir avec des aliments salés ou gras. Enfin, ne fermez pas hermétiquement la boîte : le blob a besoin d’oxygène pour respirer.

Entretien et surveillance

Une fois le blob installé dans sa boîte de Pétri, l’entretien se résume à trois gestes : hydrater, nourrir, observer. La fréquence dépend de l’activité du spécimen, visible à l’œil nu.

Hydratation : Le blob est composé à 90 % d’eau. Le substrat (agar) doit rester humide mais jamais détrempé. Vaporisez de l’eau déminéralisée (jamais d’eau du robinet, chlorée) sur le papier filtre ou directement sur l’agar si celui-ci se rétracte. En pratique, une pulvérisation fine tous les 2 à 3 jours suffit dans un environnement sec. Si des gouttelettes de condensation se forment sur le couvercle, c’est que l’humidité est excessive : aérez la boîte 10 minutes.

Nourriture : Offrez des flocons d’avoine (non cuits, sans sel) ou des flocons de céréales complètes. Déposez 1 à 2 flocons directement sur le blob, jamais en excès. Un surplus non consommé moisit et contamine la culture. Le rythme idéal : un flocon tous les 2 à 4 jours, selon la vitesse de digestion. Un blob affamé ralentit et durcit ; un blob trop nourri devient jaunâtre et produit un excès de déchets métaboliques. Observez la couleur : un beau jaune vif indique une bonne santé, un brunissement signale un stress.

Surveillance quotidienne : Notez trois paramètres : la vitesse de déplacement (le blob avance de quelques millimètres à plusieurs centimètres par heure), la formation de veines (réseau de tubes qui transporte les nutriments) et la présence de spores. Si une masse noire se forme, c’est le stade de fructification : le blob entre en dormance. Vous pouvez alors le laisser sécher sur un papier absorbant pour le conserver des mois, ou le réveiller en le réhydratant.

Gestion des problèmes : Une moisissure verte ou grise (contamination) impose de retirer immédiatement la zone infectée avec une pince stérile. Un blob qui ne bouge plus depuis 48 h est probablement déshydraté ou en dormance : vérifiez l’humidité, puis attendez. Ne manipulez jamais le blob à mains nues ; utilisez une spatule ou une pipette stérile pour éviter toute contamination bactérienne. La température idéale se situe entre 20 et 25 °C, à l’abri de la lumière directe.

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